第一节剖检动物时寄生虫标本的采集法
采集剖检动物的全部寄生虫标本并进行鉴定和计数，对寄生虫病的诊断和了解寄生虫的流行情况具有重要意义，根据工作要求的不同，可分为寄生虫学完全剖检法、个别器官的寄生虫学剖检法和对某一种寄生虫的采集法。
一、寄生虫学完全剖检法
在动物死亡（或捕杀）后，首先制作血片，染色检查，观察血液中有无寄生虫，尔后仔细检查体表，观察有无体表寄生虫，并收集之。尔后剥皮，观察皮下组织有无虫体寄生。
将各内部脏器依次取出，先收集胸水、腹水，沉淀后观察其中有无寄生虫。然后取出全部消化器官及其所附的肝、胰等腺体。取出呼吸系统、泌尿系统和生殖系统器官，心脏和大的动脉和静脉血管。
要劈开颅骨对脑进行检查，检查脊髓。检查眼和结膜腔，检查鼻腔和额窦，检查唇、颊和舌。采取全身有代表性的肌肉进行检查。
各类器官和检查方法，实际可分为两种：一种如肠、胃是有大量内容物的腔道，应在水中剖开，将内容物洗入液体中，尔后对粘膜循序仔细检查，洗下的内容物则反复加水沉淀，待液体清澈无色为止，再取沉渣进行检查。一种如肝、肺等实质器官，则首先将其撕碎成小块，置37℃温水中，待其虫体自行走出（即贝尔曼法原理），再用手在水中压组织块，将其中残留的虫体挤出，最后将液体经过反复沉淀，检查沉渣。
为了检查沉渣中纤细的较小虫体，可在沉渣中滴加浓碘液，使粪渣和虫体均染成棕黄色，继之以5％的硫代硫酸钠溶液脱色，但虫体着色后不脱色，仍保持棕黄，而粪渣及纤维均脱色，故棕色虫体易于辨认。
现将各系统的检查法分述如下：
1.消化系统先将附着其上的肝、胰取下，再将食道、胃（反刍动物应将四个胃分开）、小肠、大肠、盲肠分别结扎后分离。
食道应剖开，检查食道粘膜下有无虫体寄生，应注意有无筒线虫和纹皮蝇幼虫（牛），在食道浆膜面应检查有无肉孢子虫。
胃和各肠段应分别置于容器内，剖开，加水将内容物洗入水中。仔细检查洗净的胃及肠粘膜上是否附有虫体，并用小刀刮取胃、肠粘膜，将刮下物置解剖镜下检查。洗下物应多加生理盐水，反复地多次洗涤，沉淀，等液体清净透明后，分批取少量沉渣，洗入大培养皿的清水中，先后放于白色和黑色的背景上，寻找虫体。
肝和胰用剪刀沿胆管或胰管剪开，检查其中虫体，尔后将其撕成小块，用贝尔曼法分离虫体，并用手挤压组织，最后在液体沉淀中寻找虫体。
2.呼吸器官用剪刀将鼻、喉、气管、支气管切开，寻找虫体。用小刀刮气管粘膜，刮下物在解剖镜下检查，肺组织按肝脏处理方法。
3.泌尿器官切开肾，先对肾盂作肉眼检查，再刮取肾盂粘膜检查，最后将肾实质切成薄片，压于两玻片间，在放大镜或解剖镜下检查。剪开输尿管、膀胱和尿道检查其粘膜，并注意粘膜下有无包囊。收集尿液，用反复沉淀法处理。
4.生殖器官切开并刮下粘膜，压片检查，怀疑为马媾疫或牛胎儿毛滴虫时，应涂片染色后油浸镜检查。
5.脑先用肉眼检查有无多头蚴，再切成薄片，压片检查。
6.眼结膜和结膜腔以括搔法处理检查，剖开眼球，将前房水收集于器皿中，在放大镜下检查。
7.心和主要血管剖开将内容物洗于生理盐水中，用反复沉淀法检查（对血管内分体吸虫的收集见后）。
8.膈脚特别在猪，应先肉眼检查，见有小白点状可疑物，应剪取置玻片间压薄，在显微镜下检查。
以上是一般动物剖检时通用的方法。对不同的动物，根据解剖构造的差异，方法上有所不同。
在进行以上剖检前，最好先取粪便进行虫卵检查，初步确定该畜体内寄生虫的寄生情况，对以后寻找虫体时可能有所帮助。但也应注意，不要因为粪检结果，而给工作者带来不全面的主观印象，忽视了未在粪便中发现虫卵的那些虫体的寻找。
以上剖检法的工作量极大，因此，在某些情况下为了不同的目的，可采取下列的剖检方法。
二、个别器官的寄生虫学剖检法
有时为了特殊的目的（如检查某一地区某一器官中寄生虫寄生的情况），仅对某一器官进行检查，而对其它器官则不进行检查。
三、个别虫种（即对某一种寄生虫）的采集法
为了一定的目的（如调查某一地区某种寄生虫的流行情况，或某一药品对某种寄生虫的驱虫效果），仅对某一器官中的某种寄生虫进行收集检查。
日本分体血吸虫的收集应采用专用的方法，兹介绍如下：
动物经宰杀停止挣扎后，为防止发生血液凝固，影响虫体收集，应有四个人分别从四条腿开始从速进行剥皮。虽后，将牛头弯至牛体左侧，使牛仰卧成偏左倾斜姿势，剖开胸腔及腹腔，除去胸骨。首先，分开肺找出暗红色的后腔静脉进行结扎。接着，在胸腔紧靠脊柱的部位找到白色胸主动脉，术者左手将其托起，右手用尖头剪刀取与血管平行的方向剪一开口，然后将带有橡皮管的玻璃接管以离心方向插入，并以棉线结扎固定。橡皮管的一端与压缩式喷雾器相接，以备进水。第三，在肾脏后方紧贴脊柱处，同时结扎并列的腹主动脉和后腔静脉，以免冲洗液流向后躯其它部分。第四，在胆囊附近，肝门淋巴结背面，细心地分离出门静脉，向肝的一端紧靠肝脏处先用棉线扎紧，离肝的一端取与血管平行的方向剪一开口（应尽可能靠近肝脏，以免接管进入门静脉的肠支，而影响胃支中虫体的收集），插入带有橡皮管的玻璃接管，并固定之。为防止凝血，接管内应事先装满5%柠檬酸钠溶液，在插入接管时此溶液即倾入血管中。橡皮管的一端接有铜丝筛，以备出水收集虫体。手术结束后，即可启动喷雾器注入0.9％加温至37～40℃的食盐水进行冲洗，虫体即随血水落入铜丝筛中，直至水液变清，无虫体冲出为止。
第二节蠕虫标本的采集、保存和观察方法
一、吸虫的采集保存
1.采集在各脏器中或其冲洗物沉淀中，如发现吸虫时，应以弯头解剖针或毛笔将虫体挑出（注意！不应采用镊子夹取，否则镊子夹住的部位，会使虫体损坏变形，影响以后的观察）。挑出的虫体，体表常附有粪渣、粘膜等污物，应先放入1％的盐水溶液中。较小的虫体，可和盐水放入小试管中，加塞塞紧，充分振荡将污物除去洗净。较大的虫体可用毛笔刷洗。有些虫体的肠管内含有大量的食物，可在生理盐水中放置过夜，等其食物消化或排出。
2.固定法标本洗净后，较小的虫体，可先在薄荷脑溶液中使虫体松驰。薄荷脑溶液的配制是取薄荷脑（Menth01）24g，溶于100mL 95％的酒精中，为薄荷脑饱和酒精溶液，使用时将此液一滴，加入l00ml水中即可。
在上液中松弛的虫体，即可投入下述固定液中固定。较大较厚的虫体标本，为了以后制作压片标本的方便，可将虫体先压入两载玻片间，为了不使虫体压得过薄可在玻片两端垫以适当厚度的纸片，尔后以橡皮筋扎紧玻片两端。
固定吸虫时常用的固定液有如下各种：
1.1劳氏（Looss）固定液：适用于小型吸虫。取饱和升汞溶液（约含升汞7％）100ml，加冰醋酸2ml，混合即成。固定虫体时，将虫体放于一小试管中，加入盐水，达试管的1/2处，充分摇洗，再加入劳氏固定液摇匀，12h后，将虫体取出移入加有0.5％碘的70％的酒精中，并更换溶液数次，直到碘酒精溶液不再褪色为止，再将虫体移到70％酒精溶液中保存，若欲长期保存应在酒精中加5％甘油。
1.2酒精-福尔马林-醋酸固定液（A.F.A固定液）：本液以95％酒精50份，福尔马林（实含甲醛40％）10份，醋酸2份，水40份混合而成。大型的已夹于玻片间的虫体，可浸入此固定液中过夜。小的虫体可先放于充满2/3生理盐水的小瓶内，用力摇振，待虫体疲倦而伸展时，再将盐水倾去1/2，再加入本固定液，放置过夜。次日将虫体取出，保存于加有5％甘油的70％酒精中。
1.3福尔马林固定液：取福尔马林1份与水9份混合即得。将小型吸虫虫体或夹于玻片间的虫体投入固定液中，经24h即固定完毕。较大的夹于两玻片间的吸虫，固定液渗入较难，可在固定数小时后，将两玻片分开，这时虫体将贴附于一玻片上，将附有虫体的玻片继续投人固定液中过夜。最后将虫体置3％～5％的福尔马林溶液中保存。
经以上三种方法中任何一种固定的标本，在保存时均应给以标签。标签应用较硬的纸片（如道林纸）用铅笔书写，内容应包括标本编号、采集地点、宿主及其产地、寄生部位、虫名、保存液种类和采集时间，将以上内容一式两份书写，一份与虫体一同放于瓶内，一份贴于瓶外。
在采集标本时，尚应有登记本，将标本采集时的有关情况，按标本编号，记于登记本上。对虫体所引起的宿主的病理变化也应做详细的记载。
吸虫标本的形态观察，常需制成染色装片标本或切片标本。切片标本的制作与组织切片相同。整体装片标本的制法有以下数种。
1.苏木素法常用的为德氏（Delafield）苏木素染液，其配法如下：先将苏木素4g溶于95％酒精25ml中，再向其中加入400ml的饱和铵明矾（Ammonium Alum）溶液（约含铵明矾11%）。将此混合液曝晒于日光及空气中3～7天（或更长时间），待其充分氧化成熟，再加入甘油100ml和甲醇l00ml保存，并待其颜色充分变暗，滤纸过滤，装于密闭的瓶中备用。染色时步骤如下：
1.1将保存于福尔马林溶液中的虫体，取出以流水冲洗。如虫体原保存于70%酒精中，则先后将虫体移经50％和30％酒精中各1h，再移入蒸馏水中。
1.2将德氏苏木素染液加蒸馏水10—15倍，使呈浓葡萄酒色。将以上虫体移入此稀释的染液内，染色过夜。
1.3取出染色后的虫体，在蒸馏水中除去多余的染液，再依次通过30％，50％，70％酒精各0.5～lh。
1.4虫体移入酸酒精中褪色（酸酒精是在80％酒精100ml中加入盐酸2m1），待虫体变成淡红色。
1.5再将虫体移回80％酒精中，再循序通过90％，95%和l00％酒精中各0.5～1h。
1.6将虫体由l00％的酒精中移入二甲苯或水杨酸甲酯（亦称冬绿油或冬青油）中，透明0.5～lh。
1.7将透明的虫体放于载玻片上，滴一滴加拿大树胶，；加盖玻片封固，待干，即成。
2.卡红染色法以卡红为原料，常用的染色液有盐酸卡红和硼砂卡红等。
盐酸卡红的配制是以蒸馏水15ml加盐酸2ml，煮沸，趁热加入卡红染粉4g，再加入85％的酒精95ml，再滴加浓氨水以中和，等出现沉淀，放凉，过滤，滤液即为盐酸卡红染液。
硼砂卡红是以4％硼砂（Na2B4O7）溶液l00ml，加入卡红染粉1g，加热使其溶解，再加入70％酒精100ml，过滤，滤液即为硼砂卡红染液。
染色方法是：
2.1原保存于70％酒精内的标本，可直接取出投入染色液中染色。保存于福尔马林液内的虫体标本，应先取出水洗1～2h，尔后循序通过30％，50％，70％的酒精各0.5—lh，再投入染液中，在染液中过夜使虫体染成深红色。
2.2自染液中取出虫体，放入酸酒精中褪色，（酸酒精是以70％酒精l00ml加浓盐酸2m1），使颜色深浅分明，即虫体外层呈淡红色，内部构造呈深红色。
2.3虫体移人80%，95％和纯酒精中各0.5～1h。
2.4移入二甲苯或水杨酸甲酯中透明。
2.5已透明的虫体，移置载玻片上，加一滴加拿大树胶，加盖玻片封固。
二、绦虫的采集保存
1.采集绦虫大部分寄生于肠管中，并以头节牢固地附着于肠壁上。采集标本时，为了保证虫体的完整，切勿用力猛拉，而应将附着有虫体的肠段剪下，连同虫体浸入水中，5～6h后，虫体会自行脱落，体节也自行伸直。
2.固定将收集到的虫体，浸入劳氏固定液，70％酒精或5％福尔马林液中固定。准备做瓶装陈列的标本，以福尔马林溶液固定较好。如欲制成染色装片标本以观察其内部结构，则以劳氏固定液或酒精固定为好。
绦虫有时很长（可达数米），易于断裂而又易于相互缠结，故固定时应注意。不太长的虫体，可提住虫体后端，将虫体悬空伸长，尔后将虫体下放，逐步地浸入固定液内。过长的虫体，可先绕于一玻璃瓶上，连瓶浸入固定液内。亦可在大烧杯中，先放人以固定液浸润的滤纸一张，提取虫体后端，使虫体由头节始，逐步放落在滤纸上，加盖一层湿滤纸；再以同样操作，放上第2条虫体；如是操作，全部放好所有虫体，最后将固定液轻轻注满烧杯内，固定24h后取出。
保存于瓶内的标本应登记并加标签，其注意事项同吸虫。
3.绦虫制片法绦虫虫体较长，因此，制片时要切断虫体，根据观察的需要，采取一定部位的节片，染色后做成装片标本。绦虫的头节是决定绦虫种类的重要依据之一，应选为装片标本的材料；此外，成熟节片和孕卵节片，亦常各切取3～5节，制成染色装片标本。其染色和装片方法与吸虫同，可参阅吸虫的有关资料。