下列情况的申请单和标本不予接受：
（1）申请单与相关标本未同时送达病理科。
（2）申请单中填写的内容与送检标本不符合。
（3）标本上无有关患者的标本申请单联号或其他标志。
（4）申请单内填写的字迹潦草不清。
（5）申请单中漏填重要项目。
（6）标本严重自溶、干涸等。
（7）其他可能影响细胞检查可行性和诊断准确性的情况。
病理科不能接受的申请单和标本一律当即退回，不予存放。
临床医师釆取的细胞标本应立即涂片，并尽快放置于盛有固定液（95％乙醇）的容器内。对于需要做特殊项目检查（如微生物、特殊染色、免疫组织化学或分子生物学检查等）的标本，应按相关的技术要求进行固定或预处理。
病理医师只对病理科实际验收标本的细胞病理学诊断负责。
病理科应建立与送检方交接申请单和标本的手续制度。具体交接方法由各医院病理科自行制定。
二、申请单和标本的编号、登记
病理科验收人员应在已验收的申请单上注明验收日期，及时、准确编号（病理号），并逐项录入细胞标本登记簿或计算机内。严防病理号的错编、错登。
细胞标本的病理号可按年编序，或连续性（不分年度）编序。
同一病例同一次的申请单、细胞标本登记簿（包括计算机录入）、放置细胞标本的容器或其涂片的病理号必须完全一致。
病理科应建立验收人员与诊断医师之间申请单和涂片的交接制度。具体交接方法由各医院病理科自行制定。
在病理科内移送标本（或涂片）时，必须确保安全，严防放置标本（或涂片）的容器倾覆、破损和标本（或涂片）的散乱、缺失等。
细胞学制片的基本要求
一、细胞涂片的制备
（一）涂片质量的基本要求
1将检材涂布于载玻片的右（或左）2／3处，另1／3部位粘贴标签。
2单向涂布检材，避免细胞变形。
3均匀涂布检材，涂片厚薄适当。
4红细胞过多的涂片，可酌情进行溶解红细胞处理。
（二）涂片方法
1涂抹法用棉签或针头将标本单向、均匀地涂抹于载玻片上。
2拉片法将一滴检液置于一张载玻片上，再用另一张载玻片叠加其上并予轻压，再将该两张载玻片朝反方向拉动，从而获得两张涂片。
3推片法将一滴检液置于一张载玻片的右端，再用另一张窄边光滑的载玻片作为推片，与滴液载玻片呈40°夹角、自右向左匀力推动检液，形成涂片。
（三）痰涂片的制作
1送检的痰液应是由肺内咳出，最好是清晨空腹时自肺内深咳出的痰液。
2核查无误的收验痰液，应立即制作涂片（通常为2～3张）。
3用细签或无钩镊子挑取痰液置于载玻片上，并左右往复薄涂，随即投入固定液中。
4痰液中呈现下列性状的成分可能含有癌细胞，应注意选取制作涂片：①血丝；②灰白色痰丝（形如白色细线，微细螺旋状，牵引时可伸长）；③透明痰液（可拉成较长细丝）。同时，应及时在细胞学检查申请单上记录痰液性状。
5检查痰液中的肿瘤细胞，一般应连续送检3次以上。
（四）粘膜、皮肤表面刮取（刷取、拉取）物和分泌物涂片的制作1.阴道排出物、子宫颈刮取物涂片通常由妇产科医师将已制作、固定后的涂片送交病理科检查（注意由子宫颈外口上皮移行带刮取细胞涂片）。
2.支气管镜、胃镜等内镜的粘膜刷取物涂片（粘膜刷片）刷片通常由内镜医师制作、固定后送交病理科检查。
3食管拉网涂片从食管拉出的套网气囊适量放气后，将气囊套网在载玻片上滚动涂片，尤应将套囊上的血丝、灰白色物制作涂片。
套网中的小块组织可用来制作石蜡包埋切片。
4其他眼、耳、鼻、咽、口腔、皮肤等处病变（溃疡性病变等）的分泌物通常由临床医师以涂抹法制片送检。
（五）液体涂片的制作
液体标本（检材）包括乳头溢液、胸水、腹水、尿液、胃液、脑脊液、穿刺液、冲洗液、灌注液等。除乳头溢液外，其他液体检材一般均应先行离心（2000rpm，10～20分钟）后，取其沉淀物制作涂片；液体检材也可用细胞涂片离心机（cytospin）直接制作细胞涂片。制作好的涂片应立即固定和染色。（注意：及时在细胞学检查申请单上记录液体标本的性状和数量）液体标本的离心沉淀物较多时，将制作涂片后剩余的沉淀物固定于4％中性甲醛中1小时，然后用擦镜纸或绸布将其包裹，制作石蜡包埋切片。
1乳头溢液直接滴于载玻片上制作涂片。
（1）患者乳腺触及肿物时：用手指自肿物远方沿乳腺导管引流的方向轻力按摩挤压，获取溢液，宜取中段溢液和血性溢液做涂片。
（2）患者乳腺未触及肿物时：可自乳晕周围向乳腺外周轻力按摩挤压，获取溢液。
2胸水和腹水
（1）由患者体内抽取的胸水或腹水应尽快送交病理科验收，检液量以200～500ml为宜。因故（例如远途）延时送达时，须在标本中加入40％甲醛（加入量为送检胸水、腹水量的1／5），或加入等量的50％乙醇－生理盐水。
（2）胸水、腹水的离心，采取容器底部的液体10ml（包括可能存在的沉淀物），移入离心管内进行离心。
（3）离心后，倾去全部上清液，将离心管底部含有沉淀物的液体摇匀并用吸管吸出适量，滴注于载玻片上，制作涂片。
3尿液
（1）制作方法同胸水、腹水。
（2）尿液含有胶状物时，应先将其除去。清除方法：用0.5mmol／L氢氧化钠调节尿液pH 至6.0；离心后，倾去上清液，再向沉淀物中加入95％乙醇5～10ml（固定细胞），静置5分钟后加入蒸馏水并轻摇（溶去胶状物）；再次离心后，取沉淀物制作涂片。检查尿液中的肿瘤细胞，一般应连续送检3次以上。
4.胃液、胃冲洗液制作方法同胸水、腹水。
5.脑脊液
（1）制作方法同胸水、腹水。
（2）脑脊液内细胞一般较少，可用微孔滤膜过滤法、沉淀法或纤维捕捉法收集细胞，制作涂片。
6.冲洗液、灌洗液、穿刺液涂片制作方法同胸水、腹水。二、肿物细针穿刺物涂片（一）实施细针穿刺的准备工作1应由掌握细针穿刺技术的病理技师或医师，按照细针穿刺技术操作常规，亲自对确有适应证且无禁忌的患者采取穿刺物。针吸操作成功与否和操作者的熟练程度直接相关，因而要求穿刺操作者最好相对固定的专人完成，便于积累经验。多数报告都证实，初试者成功率很低。
2实施细针穿刺术的病理技师或医师应先了解患者的临床情况，向患者和（或）患者授权人说明实施细针穿刺的意义、局限性及其他相关问题等，取得患者和（或）家属的知情及理解，并签署由各医院制定的”申请实施细针穿刺术细胞病理学诊断患方知情同意书“。
3合格的手术操作环境。
4必备的适用手术器械和其他相关设施。
5适应证
（1）体表肿物：乳腺、甲状腺、涎腺、淋巴结、前列腺、皮肤及皮下肿物等。
（2）胸腔肿物：肺、胸膜和纵隔等处的肿物。
（3）腹腔肿物：肝、胰、肾、肾上腺、腹腔内、腹膜后和盆腔内等处的肿物。
（4）颅内肿物：通过脑穿刺及脑脊液检查。
6禁忌证难以控制的咳嗽、肺动脉高压症、进行性肺气肿、出血性体质及有”晕针史“等。
（二）肿物细针穿刺的注意事项
1.确认肿物部位并估计其大小、与表皮距离、质地（实性、囊性、硬度等），以指导穿刺的方向、深度和用力程度。
2.必须严格实行无菌操作。
3.根据肿物大小及其血供情况选择适用型号的穿刺用针头及针筒。穿刺用针头的外径为0.6～0.9mm，安置在一次性空注射器（大多用10ml，小者用5ml，大者可用50ml）上。
4.针吸法穿刺术操作要点
（1）用手固定肿物，将安装在空注射器上的穿刺用针头刺入肿物，然后根据肿物的质地、密度外拉管芯2cm 左右。
（2）迅速上下提插注射器管芯10～20次（其间变换针头方向3～4次），以使肿物不同部位的较多内容物吸入针头和注射器内。
（3）将注射器针筒与针头分离（管内负压因而解除）；随后，将该注射器针筒与仍插于肿物内的针头相接，拔出针头。
（4）针吸完成后，使注射器脱离开针头，吸取空气，再安到针头上。然后将吸出物推出到2～3张清洁的载玻片上，进行涂片。
（5）涂片方法：用针头将载玻片上的吸出物轻轻均匀地拨开，或用推片法朝一个方向展开（不可双向往返推移）。
（6）吸出物过少时，可向离心管内冲洗穿刺针头，再将冲洗液离心，然后取其沉淀物涂片。
（7）吸出物较多时，可用适量的50％乙醇－生理盐水液将涂片后注射器和针头内剩余的吸出物冲洗至离心管中，离心后，取其沉淀物制作常规石蜡包埋切片。
（8）吸出物中含有细小组织块时，应将其制作常规石蜡包埋切片。
（9）内脏肿物穿刺时，必须在影像学检查的引导下用较长细针进行穿刺。
（10）穿刺操作完成后，即在细胞病理学检查单上书写穿刺记录。
三、组织印片、压片的制备
（一）组织印片
1用锋利刀片剖开刚切取的新鲜肿瘤组织或淋巴结等，然后用清洁载玻片轻压于组织剖面处，将组织表面的细胞成分印在玻片上。用稍微加温的载玻片制备印片时，可印得较多细胞。
2制作淋巴结印片前，应先用滤纸吸去淋巴结切面上的血液和组织液。
（二）压片
1选取微小薄片组织平铺于一张载玻片上，再用另一张载玻片叠加其上并予轻压。
2脑组织质软，易于制作压片；稍硬的组织必须切成细碎薄片制作压片。
四、涂片的固定
用于HE 染色和巴氏染色的涂片必须湿固定，即涂片后立即进行固定。乳头溢液涂片和液体标本离心沉淀物涂片，应待涂膜潮干（即周膜稍干而其中央区域未干）时进行固定。用于瑞氏染色、May－Grunwald－姬姆萨染色和免疫细胞化学染色的涂片，必须干固定，即待涂片稍干后再进行固定。
（一）固定液
1.乙醇－冰醋酸液95％乙醇∶冰醋酸＝99∶1，常用。
2.乙醇－乙醚液95％乙醇49.5ml，乙醚49.5ml，冰醋酸1ml，较常用。
3.甲醇滴加在干燥涂片上，用于瑞氏染色、May－Grünwald－姬姆萨染色和免疫细胞化学染色。4.丙酮适用于酶类染色。
5.Carnoy液由无水乙醇、氯仿、冰醋酸按6∶3∶1比例混成，适用于显示核酸、糖原、粘液的染色。涂片在Carnoy 液固定3～5分钟后，应移入95％乙醇中继续固定。
对于液体标本的离心沉淀物、食管拉网获取的小块组织或吸出物中的细小组织块等，固定于4％中性甲醛中1小时，然后制作常规石蜡包埋切片。
（二）固定方法
1浸入法
（1）将稍为干燥（不能完全干燥）的涂片直接浸泡在固定液中，至少15～30分钟。
（2）因细胞容易脱落，因此一个盛有固定液的容器只宜固定一例标本的涂片。同一容器固定多例涂片时，有可能造成肿瘤细胞的交叉污染。
（3）必要时可将标本涂在硅化载玻片上，以防脱落。
（4）固定液重复使用时，应先用滤纸过滤。
（5）95％乙醇固定液多次重复使用时，必须测定其浓度，乙醇浓度低于90％时应予弃用。
2滴加法将固定液滴加于平放的干燥涂片上，应避免因固定液挥发造成沉淀。
（三）固定后未染色涂片的保存和邮寄
涂片固定15分钟后取出，立即滴加数滴甘油于涂膜上。对该涂片进行染色前，应先将其置于95％乙醇中溶去甘油。