结果：糖原及其他PAS 反应阳性物质呈红色，细胞核呈蓝色。
注意事项：
（1）糖原固定必须及时取小块组织进行固定，以免固定不透或不均，而在固定不好的组织切片中，可出现糖原颗粒趋于细胞一端的情况。
（2）配制Schiff试剂的重亚硫酸钠需质量优良，不能用陈旧无硫的刺激性试剂。
（3）染色前将Schiff试剂取出后，适应室温再进行染色，室温在15℃以下时可用40℃温水稍加温进行反应。
七、粘液物质（粘多糖）染色
Mowry阿尔辛蓝过碘酸雪夫（ABPAS）染色法（1956年）试剂配制：阿尔辛蓝染色液：阿尔辛蓝8GS1g，冰醋酸8GS 3ml，蒸馏水97ml。在溶液中加入麝香草酚2粒防腐。pH 为2.6～3.0。
染色步骤：
（1）中性甲醛液固定组织，石蜡切片，常规脱蜡至水。
（2）蒸馏水浸洗1分钟。
（3）入3％醋酸液中3分钟。
（4）入阿尔辛蓝液中30分钟或更长时间。
（5）3％醋酸液3分钟。
（6）蒸馏水冲洗3次。
（7）0.5％过碘酸氧化10分钟。
（8）自来水冲洗，蒸馏水浸洗2次。
（9）在Schiff液中10～20分钟。
（10）流水冲洗2分钟，蒸馏水洗2次。
（11）无水乙醇脱水，二甲苯透明，中性树胶封固。
结果：中性粘液物质呈红色，酸性粘液物质呈蓝色，中性和酸性粘液的混合性物质呈紫红色。
注意事项：
（1）阿尔辛蓝染色时，其组织切片上不能涂白胶和火棉胶而防止脱片，因为这些胶体中含有糖类物质，容易与染色试剂结合使之背景着色。
（2）Schiff试剂使用后，应保存于冰箱中备用。使用时一般采取滴染色法。但对于已浸染色过的试剂，不能再回收使用，防止影响染色效果。
八、色素类染色
（一）脱甲醛色素方法
（1）中性甲醛液固定组织，石蜡切片，常规脱蜡至水。
（2）用2％苦味酸无水乙醇饱和液1～5小时（须在染色缸中进行，防止乙醇液挥发而形成结晶）。
（3）自来水冲洗10分钟。
（4）蒸馏水洗后，按常规HE 染色法进行染色。在染色中最好用未有脱甲醛色素的切片作为对照观察。
（二）Masson Fontana黑色素银浸染色法（1929年）试剂配制：Fontana 氨性银液：用10％硝酸银水溶液20ml，逐滴加入浓氨水，至沉淀消失呈微乳白色，加蒸馏水20ml。
此液贮存在棕色试剂瓶内，置暗处过24小时后可应用。如果此溶液贮存在冷暗处，可保存1个月，但最好于2周内使用。
染色步骤：
（1）中性甲醛液或乙醇固定组织，石蜡切片，常规脱蜡至水。
（2）用蒸馏水充分洗涤。
（3）投入Fontana氨性银液，置于室温下暗处18～48小时。
（4）经蒸馏水洗数次。
（5）用0.2％氯化金水溶液处理1分钟。
（6）蒸馏水洗2分钟。
（7）用5％硫代硫酸钠水溶液固定2分钟。
（8）流水冲洗2分钟。
（9）PoneeauS染色液复染2～5分钟。
（10）无水乙醇脱水，二甲苯透明，中性树胶封固。
结果：黑色素及嗜银细胞颗粒呈黑色，胶原纤维呈红色，背景呈浅黄色。
注意事项：
（1）Fontana氨性银液置冰箱内保存时间不能太长，瓶口要封存好，防止因氨的丢失而发生沉淀。染色的器皿要洗干净，浸染色的试剂不能反复使用。
（2）PoneeauS染色液（详见结缔组织的胶原纤维染色法）用滴染法进行。如果用细胞核作对比染色，就可用核固红染色液。
（三）Ltllie 亚铁染色法
试剂配制：
（1）硫酸亚铁溶液：硫酸亚铁（FeSO4·7H2O）2.5g，蒸馏水100ml。
（2）醋酸铁氰化钾溶液：1％醋酸水溶液100ml，铁氰化钾1g。
染色步骤：
（1）中性甲醛液固定组织，石蜡切片，常规脱蜡至水。
（2）硫酸亚铁溶液中浸30分钟。
（3）用蒸馏水洗涤20分钟（需更换3次）。
（4）在醋酸铁氰化钾溶液中染10分钟。
（5）用1％醋酸液分化浸洗2次。
（6）PonceauS染色液复染2～5分钟。
（7）无水乙醇脱水，二甲苯透明，中性树胶或DPX 封固。
结果：黑色素呈暗绿色，背景浅绿或不着色，肌纤维和背景呈黄色。
注意事项：
（1）硫酸亚铁和铁氰化钾染色液临用时配制，不能存放。使用后的染色液及时处理。试剂瓶要洗干净。
（2）此染色法也可以使含铁血黄素呈阳性，可用结合铁反应法来进行鉴别。还可以用酸和碱及氧化剂进行脱色鉴别反应，而含铁血黄素溶解于酸，并结合形态学的特点进行对照，都能够清楚地区别。九、纤维素染色Lendrm 等MSB 染色法（1962年）本法的MSB 是指马休黄猩红蓝法（MartiusSarletblue，MSB）。
试剂配制：
（1）马休黄染液：马休黄0.5g，磷钨酸2.0g，95％乙醇100ml。
（2）亮结晶猩红6R 液：亮结晶猩红6R1.0g，蒸馏水97.5ml，冰醋酸2.5ml。
（3）苯胺蓝液：苯胺蓝0.5g，蒸馏水99ml，醋酸1ml。
（4）天青石蓝液：铁明矾2.5g溶于50ml蒸馏水内置室温过夜，加入0.25g天青石蓝，煮沸3分钟。滤过后盛入瓶中，再加入7ml甘油。此液可保存数月时间。
（5）Mayer明矾苏木素液（参见常规染色液配制，也可选用Harris苏木素液）。
染色步骤：
（1）中性甲醛液固定组织，石蜡切片，常规脱蜡至水。
（2）用天青石蓝染核3～5分钟，自来水洗2分钟。
（3）用Mayer或Harris明矾苏木素染液5分钟。
（4）经自来水洗后，用盐酸乙醇稍分化。
（5）充分自来水洗3～5分钟。
（6）95％乙醇洗后，用马休黄液2分钟。
（7）蒸馏水浸洗1分钟。
（8）用亮结晶猩红6R 液染10分钟。
（9）蒸馏水洗1分钟。
（10）用1％磷钨酸液处理3～5分钟，蒸馏水洗1分钟。
（11）入苯胺蓝溶液中染5～10分钟。
（12）1％醋酸水溶液洗1分钟。
（13）无水乙醇脱水，二甲苯透明和中性树胶封固。
结果：纤维素呈红色，陈旧性纤维素呈紫色，细胞核呈蓝色，红细胞呈黄色。
注意事项：
（1）亮结晶猩红6R（brilliantcrystalscarlet6R）染料可用酸性复红（acidfuchsin）代替，也能够取得较好效果。
（2）无水乙醇快速脱水，稍干燥，再透明和封固。
（3）在做本法时也可以同时用Mallory 或Masson 三色法及改进V.GPonceau法进行对照染色。
十、淀粉样物质染色
（一）刚果红染色法
试剂配制：
（1）刚果红染色液：刚果红1g，蒸馏水100ml。
（2）Harris：苏木素染色液（见常用苏木素染色液的配制种类）。
染色步骤：
（1）中性甲醛液固定组织，石蜡切片，常规脱蜡至水。
（2）苏木素染色液浸染2分钟。
（3）0.5％盐酸乙醇液分化数秒钟。
（4）自来水洗，蒸馏水洗2次。
（5）刚果红染色液中25分钟。
（6）无水乙醇迅速脱水2次。
（7）二甲苯透明，中性树胶封固。
结果：淀粉样物质呈红色，细胞核呈蓝色。
注意事项：
（1）苏木素染色的细胞核不能深，防止对比不清晰。
（2）淀粉样物可以结合偏光的方法取得良好效果，其色彩呈苹果绿色的双折光性。
（3）观察本法应对照HE 切片，由于含强碱性物质可以呈嗜伊红性。
（4）由于无水乙醇有脱色作用，脱水后即用冷风干燥，再透明和封固。
（二）Jurgens甲基紫染色法
试剂配制：
甲基紫染色液：甲基紫0.5g，蒸馏水100ml。
染色步骤：
（1）中性甲醛液固定组织，石蜡切片，常规脱蜡至水。
（2）甲基紫染色液2ml，水洗1分钟。
（3）蒸馏水洗2次后，用0.1％醋酸水溶液分化30秒钟。
（4）蒸馏水洗2次，浸入饱和氯化钠内5分钟。
（5）蒸馏水洗2次，即用甘油明胶封固。
结果：淀粉样物质呈红色或紫红色，细胞核呈蓝色。
注意事项：
（1）醋酸分化液必须严格控制，以免褪色较多，需在显微镜下观察，使之淀粉呈红色为止。
（2）切片上要保留些水后及时封片。组织易褪色，应该及时显微镜照相。
十一、真菌染色
（一）Grocott六胺银染色法
试剂配制：
（1）六次甲基四胺、硝酸银原液（简称六胺银原液）、3％六次甲基四胺水溶液100ml，5％硝酸银水溶液5ml。临用时将两液混合呈现乳白色，瞬间透明。
（2）六胺银硼砂染色液：六胺银原液25ml，蒸馏水25ml，5％硼砂（四硼酸钠）水溶液2ml。
（3）核固红染液：核固红0.1g，硫酸铝5g，蒸馏水100ml。将硫酸铝溶于蒸馏水中，放入核固红染色剂煮沸，冷却，待形成饱和液后再使用。
（4）亮绿染色液：亮绿0.2g，蒸馏水100ml，冰醋酸0.2ml。
染色步骤：
（1）中性甲醛液固定组织，石蜡切片，常规脱蜡至水。
（2）5％铬酸水溶液氧化1小时。
（3）流水洗2小时，蒸馏水洗2次。
（4）浸入1％亚硫酸钠水溶液去除铬酸1分钟。
（5）自来水洗5分钟，蒸馏水洗3次。
（6）浸入六胺银硼砂液染色1～1.5小时（于45～50℃温箱内），得切片呈浅棕色时。在镜下观察为准。
（7）蒸馏水浸洗3次。
（8）用0.2％氯化金水溶液调色3分钟，蒸馏水稍洗。
（9）核固红液染细胞核10分钟。
（10）自来水洗，蒸馏水洗。
（11）亮绿染色液30秒，用蒸馏水快速稍洗。
（12）无水乙醇脱水，二甲苯透明，中性树胶封固。
结果：真菌均被着色，菌丝和孢子呈黑褐色，细胞核呈红色，背景呈淡绿色。
注意事项：
（1）六胺银硼砂染色液在临用时配制，在恒温箱内染色1小时后，先取出一张切片，用蒸馏水洗去银液，在镜下观察，如果染色较淡，可再放回到染色液中。
（2）核固红染色液：放置时间不能过长，否则易失去染色效果。新配制的急用染色液，可冷却后过滤使用，染色时间3～5分钟即可。
（3）亮绿染色液，作为对比染色，其染色时间要短，不能过染，防止影响染色效果。此液有时省去步骤，均可得到较好效果。
（二）高碘酸复红染色法（1994年）
试剂配制：
（1）高碘酸氧化液：高碘酸0.5g，蒸馏水99ml，此液置冰箱内保存。
（2）Schiff染色液（参照糖类的糖原染色法）。
（3）马休黄染色液：马休黄0.5g，95％乙醇98ml，磷钨酸0.5g。
染色步骤：
（1）中性甲醛液固定组织，石蜡切片，常规脱蜡至水。
（2）高碘酸氧化液10分钟。
（3）流水洗2分钟，再用蒸馏水洗2次。
（4）入Schiff染色液中15～20分钟。
（5）流水浸洗5分钟。
（6）马休黄染色液滴染数秒钟。
（7）直接用无水乙醇脱水，二甲苯透明，中性树胶封固。
结果：真菌呈紫红色，红细胞呈浅黄色。
注意事项：
（1）高碘酸氧化液不能存放在冰箱内时间过长，否则会失去氧化效果。
（2）Schiff液存放于冰箱内备用，染色时可以冷染色，但要适当延长时间，当室温低于15℃时，应在染色盒内放些温水（约35℃）加快染色时间。
（3）马休黄液染色后，用无水乙醇脱色时可见切片上呈淡黄色为此。
十二、细菌染色
（一）Gram 碱性复红结晶紫染色法
试剂配制：
（1）苯胺油苯酚复红液：碱性复红（盐基品红）0.5g，苯胺油1ml，苯酚1g，30％乙醇70ml。碱性复红溶于70ml乙醇中，加热至90℃，冷却后再加苯酚及苯胺油。
（2）碘液：碘片1g，碘化钾2g，蒸馏水300ml。
（3）结晶紫液：草酸铵1g，95％乙醇20ml，结晶紫2g，蒸馏水80ml。结晶紫溶于乙醇，草酸铵溶于蒸馏水，二液混合，置冰箱中保存可用较长时间。
染色步骤：
（1）中性甲醛液固定组织，石蜡切片，常规脱蜡至水。
（2）苯胺油苯酚复红液5分钟。
（3）自来水洗，再用蒸馏水洗。
（4）4％甲醛（易褪色）1分钟，蒸馏水洗2次。
（5）苦味酸饱和液处理2分钟（当时看不见红色）。
（6）经过95％乙醇速洗后，放入自来水中立即变红色。
（7）蒸馏水洗2次后，用结晶紫液染色2分钟。
（8）自来水冲洗，再用蒸馏水洗。
（9）碘液作用2分钟，用水洗后，直接用滤纸吸干。
（10）二甲苯苯胺油等份混合，进行分化（镜下观察）（11）二甲苯透明，中性树胶封固。
结果：革兰阳性细菌呈蓝色，阴性细菌呈红色，细胞核呈红色。
注意事项：
（1）苯胺油苯酚复红液是一种不稳定的混合液，染色液表面易产生氧化结晶，染色时应适当加热防止氧化物质污染切片。
（2）二甲苯苯胺油分化后，须二甲苯洗除，才能在镜下观察，如果分化不足，可再进行褪色。
（二）Ziehl－Neelsen抗酸杆菌染色法
试剂配制：
苯酚复红液：碱性复红1g，纯乙醇10ml，苯酚5％水溶液100ml。碱性复红溶于乙醇内，然后与苯酚水溶液相混合，用前过滤。
染色步骤：
（1）中性甲醛液固定组织，石蜡切片，常规脱蜡至水。
（2）入苯酚复红液1小时左右。
（3）自来水洗。
（4）用0.5％盐酸乙醇分化数秒钟。
（5）水洗，用0.1％亚甲蓝水溶液复染2分钟。
（6）用95％乙醇分化，使亚甲蓝脱色，便显示清楚。
（7）无水乙醇脱水，二甲苯透明，中性树胶封固。